آزمایشگاه خاک شناسی

 

نمونه برداری خاک:

هدف:تجزيه وشناخت خاک و در نتيجه مورد استفاده قرار دادن آن است

1.تقسيم بندی زمين:بر اساس نوع زمين ونوع گياه وشيب يا مسطح بودن

2.نمونه برداری:

روشهای نمونه برداری:

الف: روش محور مختصات      ب: روش شبکه بندی     

ج: روش چند ضلعی:چند ضلعی نا مشخص را در نظر گرفته ومحل تلاقی را علامت می زنيم 

د: روش زيگزاگی:

براس گياهان زراعی وصيفی(گل وگياه) از عمقcm 30-0  نمونه برداری می کنيم ولی برای درختان از عمق   cm120-0  نمونه برداری می کنيم.

تعداد نمونه ها در 3-1 هکتار برابر با 25-20  نمونه بايد باشد (هر نمونه kg ۱/۵-۱ )

انواع نمونه: ساده ,مرکب ,دست نخورده ,دست خورده.

25-20 نمونه را با هم مخلوط کرده و سپس به ميزان   kg  ۱/۵ از نمونه را بر می داریم.

نمونه ساده:اگر هر يک از نمونه های  برداشت شده جداگانه  مورد تجزيه قرار دهیم به آن نمونه ساده گویند.

نمونه مرکب:اگر تعدادی  نمونه ساده را مخلوط کرده ویک نمونه برداريم به آن نمونه مرکب گويند.

نمونه دست نخورده: اگر نمونه حالت وساختارطبيعی خاک را برای ما حفظ کند.

نمونه دست خورده: اگر نمونه حالت وساختارطبيعی خاک را برای ما حفظ نکند.

 

برای مشاهده متن کامل  بر روی ادامه مطلب کلیک کنید.

 

ادامه مطلب

 

 

 

یا ابوالفضل عباس

رمضان ماه مهمانی خدا2

بار دیگر در رمضانی دیگر آرزوی سلامتی واستجابت دعای شما عزیزان را داریم.التماس دعا.اول رمضان 1391

رمضان ماه مهمانی خدا

*بهترین دوست، خداست، او آن قدر خوب است که اگر یک گل به او تقدیم کنید دسته گلی تقدیم تان می کند و خوب تر از آن است که اگر دسته گلی به آب دادیم، دسته گل هایش را پس بگیرد.


* اگر پیام خدا رو خوب دریافت نکردید، به «فرستنده ها» دست نزنید، «گیرنده ها» را تنظیم کنید.

* خداوند، گوش ها و چشم ها را در سر قرار داده است تا تنها سخنان و صحنه های بالا و والا را جست و جو کنیم.

* خود را ارزان نفروشیم، در فروشگاه بزرگ هستی روی قلب انسان نوشته اند: قیمت=خدا!

* این همه خود را تحقیر نکنید، خداوند پس از ساختن شما به خود تبریک گفت.

* وقتی احساس غربت می کنید یادتان باشد که خدا همین نزدیکی است.

* یادمان باشد که خدا هیچ وقت ما را از یاد نبرده است.

* کسی که با خدا حرف نمی زند، صحبت کردن نمی داند.

* آنکه خدا را باور نکرده است، خود را انکار کرده است.

* کسی که با خدا قهر است، هرگز با خودش آشنی نمی کند.

* خدا بی گناه است در پروندۀ نگاه تان تجدید نظر کنید.

* ما خلیفۀ خداییم، مثل خدا باشیم، قابل دسترس در همه جا و همه گاه.

* آنکه خدا را از زندگیش سانسور کند همیشه دچار خود سانسوری خواهد بود.

* خدا از آن کس که روزهایش بیهوده می گذرد، نمی گذرد.

* بیهوده گفته اند تنها «صداست» که می ماند، تنها «خداست» که می ماند.

* روزی که خدا همه چیز را قسمت کرد، خود را به خوبان بخشید.

* برای اثبات کوری کافیست که انسان چشم های نگران خدا را نبیند.

* شکسته های دلت را به بازار خدا ببر، خدا، خود بهای شکسته دلان است.

* به چشم های خود دروغ نگوییم، خدا دیدنی است.

* چشم هایی که خدا را نبینند، دو گودال مخوفند که بر صورت انسان دهن باز کرده اند.

* امروز از دیروز به مرگ نزدیک تریم به خدا چطور؟

*اگر از خدا بپرسید کیستی؟ در جواب «ما» را معرفی خواهد کرد! ما بهترین معرف خداییم، آیا اگر از ما بپرسند کیستی؟ خدا را معرفی خواهیم کرد؟

* وقتی خدا هست هیچ دلیلی برای ناامیدی نیست.

* آسمان، چشم آبی خداست، نگران همیشۀ من و تو.

* خداوند سند آسمان را به نام کسانی که در زمین خانه ندارند امضا کرده است.

یا مهدی ادرکنی


لیست اسامی ناظرین فنی و مسئولین فنی گلخانه در سطح استان آذربایجان شرقی

برای اطلاع از اسامی برروی لینک زیر کلیک کنید:

لیست اسامی ناظرین فنی و مسئولین فنی گلخانه


شروع دوره آموزش ناظرین فنی گلخانه از ساعت 14 روز شنبه 1390/4/11 می باشد

مکان دوره:تبریز،خیابان عباسی،ایستگاه جاج هاشم،روبروی پارک چشم انداز مرکزآموزش شهیدسرداری

وبلاگ ناظرین گلخانه آذزبایجان شرقی راه اندازی شد


ناظرین گلخانه آذربایجان شرقی



ضمنا اخبار وشرایط مسئولین فنی گلخانه متعاقبا اعلام میشود.

داستان هایی از اثرات بسم الله  

بسم الله علت حکمت لقمان
حکایت کرده اند که لقمان روزی در راهی می گذشت، پس قطعه کاغذی دید به روی زمین افتاده، چون آن را برداشت و ملاحظه نمود؛ دید بسم الله الرحمن الرحیم بر او ثبت شده است، پس آن را شسته و آبش را تناول نمود و به برکت این احترام، خداوند عالم، او را حکمت تلقین فرمود.
و لقد آتینا لقمان الحکمه**سوره لقمان، آیه 12
حکمت معانی فراوانی دارد:
1. شناخت اسرار جهان هستی.
2. رسیدن به حق از نظر گفتار و عمل و معرفت و شناسایی خداوند.
3. مجموعه ای از معرفت و علم و اخلاق پاک و تقوا و نور هدایت.
4. امام هفتم ع فرمودند: مراد از حکمت، فهم و عقل است.
5. امام صادق ع فرمودند: حکمت این است که لقمان به امام و رهبر الهی عصر خود آگاهی داشت.
اصول کافی، جلد 1-تفسیر نمونه،ج17، ص 36
ادامه نوشته

سال نو مبارک باد

ستاره بختتان بالا
سپیده صبحتان تابناک
سایه عمرتان بلند
ساز زندگیتان کوک
سرزمین دلتان سبز
سال جدید مبارک




,•’``’•,•’``’•,
’•,`’•,*,•’`,•’
.....`’•,,•’
,•’``’•,•’``’•,
’•,`’•,*,•’`,•’
.....`’•,,•’.....
,•’``’•,•’``’•,.
’•,`’•,*,•’`,•’
.....`’•,,•......
…...…,•’``’•,•’``’•,
…...…’•,`’•,*,•’`,•’
...……....`’•,,•’`
…..............…,•’``’•,•’``’•,
...........…...…’•,`’•,*,•’`,•’
..............……....`’•,,•
…..............…,•’``’•,•’``’•,
...........…...…’•,`’•,*,•’`,•’
..............……....`’•,,•’`
…...…,•’``’•,•’``’•,
…...…’•,`’•,*,•’`,•’

...……....`’•,,•’`



ببخشیدکه دیر تبریک میگم

ممنون از تبریک هاو نظراتون


عضویت در گروه ارشد باغبانی

baghbaninarvan@yahoogroups.com

http://groups.yahoo.com/group/baghbaninarvan

به زودی برنامه و منابع و شروع ارسال مطالب اعلام خواهد شد

این گروه برای دانشجویان و یا فارغ التحصیلانی که میخواهند ازمون کارشناسی ارشد باغبانی شرکت کنند می باشد.

دانشجویان سال های دوم یا سوم که از هم اکنون می خواهند خود را اماده کنند می توانند عضو این گروه شوند.

گروه ارشد باغبانی نارون از اوایل خرداد با ثبت نام حداقل ۱۰ نفر شروع به ارسال مطالب خود به صورت روزانه به اعضای گروه می کند.

برای اطلاعات بیشتر می توانید به وبلاگhttp://www.narvan67.blogfa.com/سر بزنید.

میوه چه درختی هستی؟ ( فال و طالع بینی میوه )

(26 تیر تا 4 مرداد) (25 دی تا 3 بهمن) درخت سرو (اعتماد به نفس)

فردی با توان و قدرت فوق العاده، کسی که می داند چطور خود را با شرایط مختلف در زندگی وفق بدهد. هدایای غیر منتظره را دوست دارد و از سلامتی بدنی برخوردار است. خجالتی نیست و اعتماد به نفس دارد. سخنرانی برجسته، فردی مصمم و با اراده، کمی عجول و بی طاقت و دوست دارد که دیگران را تحت تأثیر قرار بدهد. با استعداد، سخت کوش و اغلب خوش بین است و قادر است سریع تصمیم بگیرد.

(1 تا 10 فروردین) (4 تا 13 مهر) درخت زبان گنجشک (حساسیت)

سرشار از جذابیت، با نشاط و سرزنده است و دوست دارد توجه دیگران را به خود جلب کند. عاشق زندگی، فعالیت و حتی پیچیدگی ها است. مستقل، خوش سلیقه، پراحساس، یار و هم صحبتی خوب است. کسی که تمایل به عفو و گذشت ندارد.

(24 خرداد تا  4 تیر) درخت سیب (عشق)

فردی آرام، گاهی اوقات خجالتی، بسیار جذاب و دلربا با رفتاری مناسب و سنجیده، ماجراجو و بی باک، حساس و ... دوست دارید که دیگران را دوست داشته باشید و سایرین هم شما را دوست داشته باشند. با وفا، حساس و بسیار بخشنده و با استعداد. شما عاشق بچه ها هستید.

(25 اردیبهشت تا 3 خرداد) (22 آبان تا 1 آذر) درخت ون (بلند پروازی)

فوق العاده جذاب، پرانرژی، خودجوش و پر مسئولیت هستید. انتقاد را دوست ندارید. جاه طلب، بلند پرواز، باهوش، مستعد و قابل اطمینان هستید. به پول اهمیت می دهید. خواستار توجه از سوی دیگران هستید و به پشتوانه و حمایت احساسی نیاز دارید.

(22 آذر تا 1 دی) درخت راش (خلاقیت)

فردی با سلیقه، کسی که به ظاهر خودش اهمیت زیادی می دهد. یک برنامه ریز خوب برای زندگی و کار و مسائل اقتصادی، فردی که بدون لزوم بی گدار به آب نمی زند. منطقی و مونس و یاری بی نظیر در زندگی به شمار می روید.

(15 تا 24 اردیبهشت) (12 تا 21 آبان) درخت شاه بلوط (درستکاری)

هیکل و اندامی خارق العاده، پرابهت، حس عدالت خواهی بالا، یک طراح و سیاستمدار است. به راحتی آزرده خاطر می شود. بسیار حساس، کوشا، گاهی اوقات برتر از دیگران عمل می کند و گاهی در ارتباطات خود با سایرین سوء تفاهم برایش بوجود می آید. خانواده مدار و از لحاظ فیزیکی روی فرم است.

(14 تا 23 مرداد) (9 تا 18 بهمن) درخت سدر (وفاداری)

فردی قوی، عضلانی، انعطاف پذیر، کسی که آنچه زندگی به اجبار به او می دهد می پذیرد و اما لزوماً آن را دوست ندارد. سعی می کند ساده و خوش بین باشد. دوست دارد از نظر مالی مستقل عمل کند. مهربان و عاطفی، از تنهایی متنفر، با وفا و گاهی اوقات هم به زودی عصبانی می شود. با احتیاط، تحصیل علم و دانش و کمک به دیگران را دوست دارد.

(16 تا 25 تیر) (12 تا 24 دی) درخت نارون (بزرگواری)

قیافه و ظاهری خوب دارد و در پوشیدن لباس خوش سلیقه است. تقاضا و خواسته های او در حد اعتدال است. کم ادعا است و اشتباهات را فراموش نمی کند. با نشاط و سرزنده است و دوست دارد راهنمایی بشود، اما نه اینکه از دیگران اطاعت کند. شریکی درستکار و با وفا و دوست دارد برای سایرین تصمیم بگیرد. بزرگوار و نجیب، سخاوتمند و شوخ طبع و فردی کارآمد است.

(14 تا 23 خرداد) (12 تا 21 آذر) درخت انجیر (حساسیت)

فردی مستقل، درستکار، با وفا که از ضد و نقیض گویی و بحث متنفر است. زندگی و دوستانش را دوست دارد. از بچه ها و حیوانات لذت می برد. اجتماعی و شوخ طبع است و دوست دارد که بعد از ساعت های طولانی کار سخت استراحت کند و از استعداد هنری و هوش بالایی برخوردار است.

(5 تیر تا 15 تیر) (2 تا 11 دی) درخت صنوبر (رمز و راز)

فوق العاده با سلیقه است و نمی تواند تنش و فشار عصبی را تحمل کند. زیبایی را دوست دارد. گاهی افسرده می شود. سرسخت و لجباز است و به همان نسبت که دوست دارد نزدیکان خود را حمایت و مراقبت کند، با افراد غریبه هم به همان شکل رفتار می کند. نسبتاً کم ادعا، سخت کوش، با استعداد، فداکار، دور از خودپسندی و فردی که دوستان زیادی دارد و بسیار قابل اعتماد است.

(24 شهریور تا 3 مهر) (22 تا 30 اسفند) درخت فندق ( خارق العادگی)

جذاب و گیرا، شوخ طبع، بسیار فهمیده و فردی که می داند چطور روی دیگران تأثیر ماندگار داشته باشد. در امور اجتماعی، فعال، مردمی و اغلب اوقات دمدمی مزاج، درستکار، کمال گرا و در رعایت عدل و انصاف قاضی خوبی است.

(13 تا 22 شهریور ) (11 تا 21 اسفند) درخت لیمو ترش (شک و تردید)

یا هوش و سخت کوش است و آن چه را زندگی به او می دهد می پذیرد. البته بعد از آن که سعی می کند شرایط بد را به خوب تغییر بدهد. از فشارهای عصبی نفرت دارد. از مسافرت و تعطیلات کوتاه لذت می برد. ممکن است خشن به نظر بیاید، اما واقعاً روحی لطیف دارد. همیشه آماده جانفشانی برای افراد خانواده و دوستان است. بسیار بااستعداد است، اما برای استفاده و بهره بردن از آن ها باید زمان پیدا کند. خصلت رهبری بالایی دارد و فوق العاده وفادار است.

(4 تا 13 خرداد) (2 تا 11 آذر) درخت ممرز ( خوش سلیقگی)

زیباست و به اوضاع و احوال و ظاهر خود توجه دارد. خوش سلیقه و فداکار است و زندگی را تا جایی که ممکن باشد راحت می گیرد. زندگی را به سوی منطق و انضباط سوق می دهد. به دنبال مهربانی و تقدیر از دوستان است. تصمیم گیری برای او سخت است و فردی بسیار قابل اعتماد به شمار می رود.

(11 تا 20 فروردین) (14 تا 23 مهر) درخت افرا ( استقلال فکری)

فردی معمولی نیست و سرشار از تصور و خلاقیت و ابتکار، خجالتی و تودار، بلندپرواز و مغرور است. متکی به نفس، به دنبال تجارب جدید و گاهی عصبی است اما حافظه و ذهنی قوی دارد و به آسانی یاد می گیرد و همیشه می خواهد اثری خوب روی دیگران داشته باشد.

(23 شهریور) درخت زیتون (عقل)

عاشق مهربانی و رأفت، منطقی و متعادل است و از خشونت دوری می کند. بردبار و شکیبا، با نشاط و سرزنده، آرام و عادل است و قلبی رئوف و مهربان دارد. از هرگونه بخل و حسادت دوری می کند. عاشق مطالعه است و از معاشرت با افراد آگاه و فرهیخته لذت می برد.

(24 مرداد تا 2 شهریور) (19 تا 30 بهمن) درخت کاج ( صلح و آشتی)

عاشق مصاحبت و شرکت در گفتگوهایی است که به توافق منجر بشود. باید در زندگی آرامش داشته باشد. عاشق کمک کردن به دیگران است و تخیلی پویا دارد. دوست دارد شعر بسازد و به مد علاقه ندارد. همیشه ملاحظه دیگران را می کند. با همه خیلی دوستانه رفتار می کند. احساسات لطیفی دارد و به عاطفه و اطمینان خاطر نیاز دارد.

(1 تا 14 اردیبهشت) (5 تا 13 مرداد) (4 تا 8 بهمن) درخت سپیدار (تردید و عدم ثبات)

جذاب به نظر می آید. با استعداد است. اما اعتماد به نفس بالایی ندارد. در مواقع لزوم بسیار شجاع است و به مهربانی و خوی خوشایند نیاز دارد. بسیار مشکل پسند و غالباً تنها است و طبعی هنرمندانه دارد. هماهنگ کننده خوبی است و به فلسفه علاقمند است. در هر موقعیتی قابل اعتماد است و به طور جدی در امور مشارکت دارد.

(21 تا 31 فروردین) (24 مهر تا 11 آبان) درخت گردو (اشتیاق و شور)

نجیب و با دید وسیع نسبت به جهان، خودجوش و بلندپروازی او نامحدود است. فردی غیرقابل انعطاف، شریکی استثنایی اما بدقلق است. همیشه مورد علاقه نیست اما اغلب تمجید و تحسین می شود. مدیر و باهوش، بسیار پر حرارت اما گاهی اوقات مغرور است.

(3 تا 12 شهریور) (1 تا 10 اسفند) درخت بید مجنون (اندوه)

فردی که دوست دارد از فشارهای روحی دور باشد. زندگی خانوادگی را دوست دارد و سرشار از امید و رؤیا است. جذاب، بسیار مهربان، عاشق زیبایی، با استعداد زیاد در موسیقی، عاشق سفر به نقاط غیرمعمول، خستگی ناپذیر، غیرقابل پیش بینی، درستکار و فردی که می تواند تحت تأثیر قرار بگیرد، اما نه هنگامی که در تنگنا باشد. حس ششم خوبی دارد و عاشق خنداندن دیگران است.

دام شیطان

مردی صبح زود از خواب بیدار شد تا نمازش را در خانه خدا (مسجد) بخواند.
لباس پوشید و راهی خانه خدا شد.
در راه به مسجد، مرد زمین خورد و لباسهایش کثیف شد. او بلند شد،
خودش را پاک کرد و به خانه برگشت.
مرد لباسهایش را عوض کرد و دوباره راهی خانه خدا شد.. در راه به مسجد و
در همان نقطه مجدداً زمین خورد!
او دوباره بلند شد، خودش را پاک کرد و به خانه برگشت.. یک بار دیگر لباسهایش
را عوض کرد و راهی خانه خدا شد.
در راه به مسجد، با مردی که چراغ در دست داشت برخورد کرد و نامش را پرسید.
مرد پاسخ داد: (( من دیدم شما در راه به مسجد دو بار به زمین افتادید))..
از این رو چراغ آوردم تا بتوانم راهتان را روشن کنم.
مرد اول از او بطور فراوان تشکر می کند و هر دو راهشان را به طرف مسجد
ادامه می دهند. همین که به مسجد رسیدند، مرد اول از مرد چراغ بدست
در خواست می کند تا به مسجد وارد شود و با او نماز بخواند.
مرد دوم از رفتن به داخل مسجد خودداری می کند.
مرد اول درخواستش را دوبار دیگر تکرار می کند و مجدداً همان جواب را می شنود.
مرد اول سوال می کند که چرا او نمی خواهد وارد مسجد شود و نماز بخواند.
مرد دوم پاسخ داد: ((من شیطان هستم.)) مرد اول با شنیدن این جواب جا خورد..
شیطان در ادامه توضیح می دهد:
((من شما را در راه به مسجد دیدم و این من بودم که باعث زمین خوردن شما شدم.))
وقتی شما به خانه رفتید، خودتان را تمیز کردید و به راهمان به مسجد برگشتید،
خدا همه گناهان شما را بخشید. من برای بار دوم باعث زمین خوردن شما شدم
و حتی آن هم شما را تشویق به ماندن در خانه نکرد، بلکه بیشتر به راه مسجد برگشتید.
به خاطر آن، خدا همه گناهان افراد خانواده ات را بخشید. من ترسیدم که اگر یک بار دیگر باعث زمین خوردن شما بشوم، آنگاه خدا گناهان افراد دهکده تان را  ببخشد.
بنابراین، من سالم رسیدن شما را به خانه خدا (مسجد) مطمئن ساختم.

داستان کوتاه " حضرت موسی(ع) و مرد کشاورز "


کشاورز |
 20JOK.COM
روزی حضرت موسی به خداوند متعال عرض کرد: دلم می خواهد یکی از آن بندگان خوبت را ببینم. خطاب آمد: به صحرا برو. آنجا مردی کشاورزی می کند. او از خوبان درگاه ماست. حضرت به صحرا آمد و مردی را مشغول به کشاورزی دید. حضرت تعجب کرد که او چگونه به درجه ای رسیده است که خداوند می فرماید از خوبان ماست. از جبرئیل پرسش کرد. جبرئیل عرض کرد: در همین لحظه خداوند او را امتحان میکند، عکس العمل او را مشاهده کن. بلیه ای نازل شد که آن مرد در یک لحظه هر دو چشمش را از دست داد. نشست و بیلش را در مقابلش قرار داد و گفت: مولای من تا تو مرا بینا می پسندیدی من داشتن چشم را دوست می داشتم. حال که تو مرا نابینا می پسندی من نابینایی را بیش از بینایی دوست می دارم. حضرت دید این مرد به مقام رضا رسیده است. رو کرد به آن مرد و فرمود: ای مرد من پیغمبرم و مستجاب الدعوه. میخواهی دعا کنم خداوند چشمانت را شفا دهد؟ مرد گفت: خیر. حضرت فرمود: چرا؟ گفت: آنچه مولای من برای من اختیار کرده بیشتر دوست می دارم تا آنچه را که خودم برای خودم بخواهم

با عرض سلام دوباره و با تشکر از نظرات سازنده و امید بخش شماعزیزان

به اطلاع می رسانم که به دلیل برخی مشکلات متاسفانه نتوانستم در به روز رسانی این وب سایت کوشا باشم

لذا از شما بازید کنندگان گرامی دعوت می شود مطالب ارزنده یا نظرات سازنده خودرا در اختیار ایتجانب قرار دهید تا در ادامه راه  این وب سایت به اینجانب یاری برسانید.

شما عزیزان می توانیدمطالب خودتان را به آدرس الکترونیکی hadi.jafarpour @ gmail .com  به طوری که در قسمت subject نامه الکترونیکی عدد 1053 را درج کرده اید ارسال فرمایید.

لازم به ذکر است مطالب ارائه شده شما عصرهای چهارشنبه مورد بازدید قرار گرفته ،سپس در وبسایت با نام شما درج خواهد شد.

hormon

HORMONAL CONTROL OF GUMMOSIS IN Rosaceae Ma r i a n Sa ni ews ki 1 , J u ni c hi Ue da 2, Ke n su ke Mi yamo t o2 , Ma r c i n Ho r bowi c z 3 a n d J e r z y Pu ch a l s ki4 A B S T R A C T Gums are induced by infection, insect attack, mechanical and chemical injury, water stress, and other environmental stressors in some plant species. All of these factors are believed to act via ethylene produced in plant tissues. Ethylene is believed to be the main factor responsible for the induction of gummosis. Ethylene or ethylene-releasing compounds such as ethephon (2-chloroethylphosphonic acid) substantially stimulate gum formation in stone-fruit trees and their frui ts of the Rosaceae family, such as cherries, ornamental Japanese cherries, plums, apricots, peaches and almonds. Gums consist mostly of polysaccharides, although they contain several other substances as well. Biotic and abiotic stressors cause a rapid increase in the level of endogenous jasmonates, mainly jasmonic acid (JA). Jasmonates are a new group of plant hormones. Infection, insect attack, mechanical wounding and other stresses induce ethylene production in plant tissues. Jasmonates exogenously applied to plant tissues also stimulate ethylene production. Jasmonates substantially induces gummosis in cherries, plums, peaches and apricots. In this review, the ways in which ethylene and jasmonates act and the pathways of gum biosynthesis are discussed. Key words: ethylene, jasmonates, gummosis, Rosaceae, plum, cherry, peach, almond, apricot Environmental stress factors, ethylene and gummosis Gummosis is widely encountered throughout the plant kingdom. Gum formation in plants is induced by environmental stressors such as infection, insect attack, flooding, and mechanical or chemical injury. All of the factors which stimulate gum exudation also promote ethylene production in plant tissues (Boothby, 1983). Ethylene or ethylene-releasing compounds such as ethephon (2-chloroethylphosphonic acid) stimulate gum formation in trees and fruits of stone-fruit species of the Rosaceae family, such as: ●apricots (Prunus armeniaca L.) (Bradley et al., 1969); ●Japanese apricots (Prunus mume Sieb. et Zucc.) (Li et al., 1995); ●cherries (Prunus cerasus L.) (Olien and Bukovac, 1982ab); ●ornamental Japanese cherries (Prunus yedoensis) (Ueda et al., 2003); ●peaches (Prunus persica Batsch.) (Buchanan and Biggs, 1969; Li et al., 1995); ●plums (Prunus domestica L.) (Bukovac et al., 1969); and ●almonds (Prunus amygdalus Batsch.) (Ryugo and Labavitch, 1978). Based on these studies, ethylene is believed to be the main factor responsible for the induction of gummosis.In peaches and Japanese apricots, gummosis can be caused by Botryosphaeria dothidea and Lasiodiplodia theobromae (syn. Botryodiplodia theobromae) (Li et al., 1995; Beckman, 2003; Okie and Reilly, 1983). In apricot shoots, gum formation can be caused by the Monilia laxa, M.fructigena, Cytospora cincta, or by larvae of Grapholita molesta (Rosik et al., 1971, 1975). In plum and cherry trees, gummosis can be caused by the bacterium Pseudomonas syringae or the fungus Stereum purpureum (Boothby, 1983). When a solution of naphthalene acetic acid (NAA) is applied to peach trees, it inhibits sprout formation well, but causes severe gummosis around the treated areas (Couvillon et al., 1977).The rate of ethylene production in vegetative tissue is correlated with the internal level of the free auxin. Regulation of auxin-induced ethylene biosynthesis has been found in mungbean and pea seedlings. Indole-3-acetic acid (IAA) stimulates ethylene production by inducing synthesis of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC) from S-adenosylmethionine (SAM) (Yang and Hoffman, 1984). Gummosis induced by NAA in peach trunks is probably associated with ethylene production. IAA and NAA substantially stimulate ethylene production in tulip stems (Saniewski et al., 2003 b).Gums are complexes of different substances, mostly polysaccharides of diverse structure. The composition of gum polysaccharides varies from species to species and from cultivar to cultivar (Boothby, 1983; Saniewski et al., 2002, 2004ab). Gummosis of fungal origin significantly reduces tree growth and fruit yield in susceptible peach cultivars (Beckman, 2003). This kind of gummosis is difficult to control with fungicides (Beckman, 2003; Li et al., 1995).Breeding cultivars resistant to pathogens and insects may be the only effective way to limit or eliminate gummosis. Gum duct formation Gum ducts have been found in both woody tissues and fruits in all cultivated Prunus species. Gum ducts form naturally in healthy fruit trees. However, gum production intensifies after treatment with ethylene or ethylene releasing compounds, infection, insect attack, mechanical damage, and environmental stress (Morrison and Polito, 1985). Gum duct formation is one of the processes involved in cell wall decomposition. This means that it is associated with living tissue. In cherry shoots, the beginning of gum duct formation can usually be seen in the nonlignified tissue formed by the cambium during lateral growth. The cells from which form the gum ducts are called the initial cells. They can be identified by their dense cytoplasm and by the more intense staining of their cell walls with the periodic acid-Schiff’s (PAS) reaction for carbohydrates. The dissolution of cells starts in the center of the initial cells. Gum ducts of different sizes finally form in the wood. After the gum ducts form, the cambium remains active, and the ducts finally become enclosed in the wood (Stösser, 1979). In almond fruits, the first sign of gum duct initiation is the differentiation of densely cytoplasmic secretory cells of the mesocarpal vascular parenchyma (Morrison and Polito, 1985). These secretory cells contain abundant dictyosomes, dictyosomal vesicles, mitochondria, and rough endoplasmic reticulum. Duct formation starts with the schizogenous separation of parallel rows of secretory cells. Later, the cytoplasm of the secretory cells degenerates as gum accumulates in the space between the plasmalemma and the cell wall. Finally, the cell walls and remaining cytoplasm disintegrate. Gum is primarily a secretory product of specialized secretory cells, but decomposed cell walls also appear to be incorporated into the gum during the lysigenous stage of duct development (Morrison and Polito, 1985). In intact almond fruits, there was a transient increase in ethylene production during gum duct initiation. Treatment with ethylene promoted gum duct formation (Morrison et al., 1987a). In almonds, cell wall-degrading enzymes extracted from the free space of the cell wall are active during gum duct formation (Morrison et al., 1987b). Polygalacturonase and 1,3-β-glucanase activity rapidly increased during or right before the early schizogenous stage of duct initiation. α-galactosidase, β- galactosidase, α-arabinosidase and α-mannosidase were active during later lysigenous stage of duct formation. Jasmonates and gummosis Jasmonic acid (JA), methyl jasmonate (JA-Me) and related compounds are widely distributed throughout the plant kingdom. They show various biological activities in regulating plant growth and development. These compounds are called jasmonates, a new group of plant hormones (Ueda and Kato, 1980; Saniewski, 1995; Creelman and Mullet, 1997; Koiwa et al., 1997;Murofushi et al., 1999). Jasmonates promote gum production in tulip bulbs and stone-fruit trees and their fruits (Saniewski et al., 2000). JA-Me induced gum formation in plum shoots and fruits, peach shoots, cherry shoots and apricot shoots (Saniewski et al., 1998; 2003a; 2004ab). Endogenous jasmonates rapidly increase in plant tissues in response to infection, insect attack, mechanical damage, osmotic stress and other abiotic stressors (Saniewski, 1997). Stress induces ethylene production in plants. Jasmonates increase ethylene biosynthesis in intact plants and their organs by stimulating ACC synthase and ACC oxidase activity (Saniewski, 1995; 1997; Saniewski et al., 1995). Exogenously applied JA-Me substantially increases ethylene production in pre-climacteric apples and in tomatoes at different stages of ripening(Saniewski, 1995). How jasmonates control ethylene biosynthesis in stressed tissues is not yet fully understood. In the plants described above, JA-Me seems work by the same mechanism as ethephon (Saniewski et al., 2004ab). Interaction of ethylene and jasmonates in induction of gummosis Applying JA-Me and ethephon at the same time enhances gum production in cherry, plum, apricot and peach shoots far more than applying either JA-Me or ethephon alone. Endogenous jasmonates and exogenously applied ethylene act synergistically in gum formation. The reverse situation is also possible. The level of endogenous ethylene may be high enough to induce gum formation with exogenously applied JA-Me. Another possibility is that ethylene was able to induce gum formation without an increase in ethylene concentration because the process had already been triggered by JA-Me. When ethylene binds to its receptor on the plasma membrane, it might sensitize JA-Me membrane receptors (Xu et al., 1994). In this case, ethylene and JA-Me may co-regulate osmotin gene expression. JA-Me and ethylene synergistically caused the breakdown of cell membranes and cell disintegration (Emery and Reid, 1996). This might be the reason for the induction of gum formation. Ethylene interacts with jasmonates in gummosis and other physiological processes (Saniewski et al., 1999).When JA-Me alone is applied ornamental Japanese cherry shoots, it does not induce gum formation. This is probably because the level of endogenous ethylene is too low to induce gummosis (Ueda et al., 2003). When inhibitors of cell wall polysaccharides biosynthesis such as monensin and 2,6-dichlorobenzonitrile are applied together with ethephon or JA-Me, they do not inhibit gum production (Saniewski et al., 2004b). Gummosis is therefore probably independent of the sugar metabolism involved in the biosynthesis of cell wall polysaccharides. When ethephon is applied together with inhibitors of jasmonates biosynthesis such as diethyldithiocarbamate, salicylic acid, acetylsalicylic acid, indomethacin, ibuprofen, phenidone, or monophenylbutazone, it inhibits gum production in plum fruits. On the other hand, when inhibitors of ethylene biosynthesis such as salicylic acid, acetylsalicylic acid, aminooxyacetic acid and CoCl2 are applied together with JA-Me, they do not limit gum formation. This is difficult to explain, though it is possible that these inhibitors are only partially effective in inhibiting ethylene production. The gums induced by ethephon, JA-Me, or both together have a similar polysaccharide composition. Ethephon and JA-Me therefore probably induce gummosis by the same or a very similar mechanism (Saniewski et al., 2002, 2004ab). The induction and production of gums is regulated by a signal network of jasmonates and ethylene, especially by cross-signals between them. Further research is needed to elucidate the physiological roles of ethylene and jasmonates in gum induction and formation. The physiological role of gums in plants is not yet clearly understood. Gums may play a role in inhibiting the spread of bacterial and fungal pathogens within infected tissues and from infected tissues to healthy ones. Gummosis in stone-fruit trees and their fruits is strictly connected with plant defense system against infection and insect attack. Gummosis reduces tree growth and fruit yield, especially in susceptible cultivars of stone-fruit species. Breeding cultivars resistant to pathogens and insects may be the only effective way to limit or eliminate gummosis. REFERENCES Beckman T.G. 2003. Impact of fungal gummosis on peach trees. HORTSCIENCE 38: 1141-1143. Boothby D. 1983. Gummosis of stone-fruit trees and their fruits. J. SCI. FOOD AGRIC. 34: 1-7. Bradley M.V., Marei N., Crane J.C. 1969. Morphological and histological effects of ethrel on the apricot, Prunus armeniaca L. as compared with those of 2,4,5- trichloro- phenoxyacetic acid. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 94: 316-318. Buchanan D.W., Biggs R.H. 1969. Peach fruit abscission and pollen germination as influenced by ethylene and 2-chloroethane phosphonic acid. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 94: 316-318. Bukovac M.J., Zuicconi F., Larson R.P., Kesner C.D. 1969. Chemical promotion of fruit abscission in cherries and plums with special reference to 2- chloroethylphosphonic acid. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 94: 226-230. Couvillon G.A., Bass S., Joslin B.W., Odom R.E., Roberson J.E., Sheppard D., Tanner R. 1977. NAA-induced sprout control and gummosis in peach. HORTSCIENCE 12: 123-124. Creelman R.A., Mullet J.E. 1997. Biosynthesis and action of jasmonates in plants. ANNU. REV. PLANT PHYSIOL. PLANT MOL. BIOL. 48: 355-381. Emery R.J.N., Reid D.M. 1996. Methyl jasmonate effects on ethylene synthesis and organ-specific senescence in Helianthus annuus seedlings. PLANT GROWTH REGUL. 18: 213-222. Koiwa H., Bressan R.A., Hasegawa P.M. 1997. Regulation of protease inhibitors and plant defense. TRENDS PLANT SCI. 2: 379-384. Li H.-Y., Cao R.-B., Mu Y.T. 1995. In vitro inhibition of Botryosphaeria dothidea and Lasiodiplodia theobromae, and chemical control of gummosis disease of Japanese apricot and peach trees in Zhejiang Province, China. CROP PROT. 14: 187-191. Morrison J.C., Greve L.C., Labavitch J.M. 1987a. The role of cell wall-degrading enzymes in the formation of gum ducts in almond fruit. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 112: 367-372. Morrison J.C., Labavitch J.M., Greve L.C.V. 1987b. The role of ethylene in initiating gum duct formation in almond fruit. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 112: 364-367. Morrison J.C., Polito V.S. 1985. Gum duct development in almond fruit, Prunus dulcis (Mill.). D.A. Webb. BOT. GAZ. 146: 15-25. Murofushi N., Yamane H., Sakagami Y., Imaseki H., Kamiya Y., Iwamura H., Hirai N., Tsuji H., Yokota T., Ueda J. 1999. Plant Hormones. In: Comprehensive Natural Products Chemistry (Editor Miscellaneous Natural Products including Marine-in Chief: Sir Derek Barton, Koji Nakanishi, Executive Editor: Otto Meth- Cohn), Vol. 8, Natural Products, Pheromones, Plant Hormones, and Aspects of Ecology (Volume Editor: Kenji Mori), Elsevier, Amsterdam, pp. 19-136. Okie W.R., Reilly C.C. 1983. Reaction of peach and nectarine cultivars and selections to infection by Botryosphaeria dothidea. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 108: 176-179. Olien W.C., Bukovac M.J. 1982a. Ethephon-induced gummosis in sour cherry (Prunus cerasus L.) I. Effect of xylem function and shoot water status. PLANT PHYSIOL. 70: 547-555. Olien W.C., Bukovac M.J. 1982b. Ethephon-induced gummosis in sour cherry (Prunus cerasus L.). II. Flow characteristics of gum solutions. PLANT PHYSIOL. 70: 556-559. Rosik J., Kubala J., Stanova M., Lacok P. 1971. Structural properties of apricot gum polysaccharides. IV. Observation on their changes during vegetative cycle after evoked gummosis by pathogens. BIOLOGIA (Bratislava) 26: 13-18. Rosik J., Kubala J., Kardošova A., Lacok P. 1975. Amino acids and inorganic compounds in apricot-tree gum (Prunus armeniaca L.) and in the polysaccharides prepared from this gum. BIOLOGIA (Bratislava) 30: 255-263. Ryugo K., Labavitch J. 1978. Gums and mucilages in hulls of almonds. J. AMER. SOC. HORT. SCI. 103: 568-570. Saniewski M. 1995. Methyl jasmonate in relation to ethylene production and other physiological processes in selected horticultural crops. ACTA HORTIC. 394: 85-98. Saniewski M. 1997. The role of jasmonates in ethylene biosynthesis. In: A.K. Kanellis, C. Chang, D. Grierson (eds.), Biology and Biotechnology of the Plant Hormone Ethylene, Kluwer Academic Publ, Dordrecht, Boston, London, pp. 39-45. Saniewski M., Lange E., Czapski J. 1995. Rola estru metylowego kwasu jasmonowego – nowego hormonu roślinnego w biosyntezie etylenu. POSTĘPY NAUK ROLNICZYCH 3: 3-17. Saniewski M., Miyamoto K., Ueda J. 1998. Methyl jasmonate induces gums and stimulates anthocyanin accumulation in peach shoots. J. PLANT GROWTH REGUL. 17: 121-124. Saniewski M., Miyamoto K., Ueda J. 2004a. Carbohydrate composition of gum, anthocyanin accumulation and leaf abscission in peach shoots induced by methyl jasmonate and/or ethylene. ZESZ. PROB. POST. NAUK ROLN. 496: 619-626. Saniewski M., Miyamoto K., Ueda J. 2004b. Gum induction by methyl jasmonate in fruits, stems and petioles of Prunus domestica L. ACTA HORT. 636: 151-158. Saniewski M., Ueda J., Horbowicz M., Miyamoto K., Puchalski J. 2002. Gum in apricot (Prunus armeniaca L.) shoots induced by methyl jasmonate. ACTA AGROBOT. 54: 27-34. Saniewski M., Ueda J., Miyamoto K. 1999. Interaction of ethylene with jasmonates in the regulation of some physiological processes in plants. In: A.K. Kanellis, C. Chang, H. Klee, A.B. Bleecker, J.C. Pech, D. Grierson, (eds), Biology and Biotechnology of the Plant Hormone Ethylene II, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Boston, London, pp. 173-187. Saniewski M., Ueda J., Miyamoto K. 2003a. Indukcja gum przez jasmonian metylu w pędach wiśni (Prunus cerasus L.). I Zjazd Polskiego Towarzystwa Nauk Ogrodniczych nt. ”Współczesne Ogrodnictwo i JakośćŻycia”, Kraków, 9-11 września, 2003, FOLIA HORTICULTURAE, Supplement 2003/1, pp. 352-354. Saniewski M., Ueda J., Miyamoto K., Horbowicz M., Puchalski J. 2000. Methyl jasmonate induces gummosis in plants. HUMAN AND ENVIRONMENTAL SCIENCES 9: 93-100. Saniewski M., Ueda J., Miyamoto K., Urbanek H. 2003b. Interactions between ethylene and other plant hormones in regulation of plant growth and development in natural conditions and under abiotic and biotic stresses. In: M. Vendrell, H. Klee, J.C. Pech, F. Romojaro (eds), Biology and Biotechnology of the Plant Hormone Ethylene III., IOS Press, Amsterdam, Berlin. Oxford, Tokyo, Washington, DC, NATO Science Series, Series I: Life and Behavioural Sciences, Vol. 349, pp. 263-270. Stösser R. 1979. Investigations on gum duet formation in cherries using a plastic embedding-medium. SCIENTIA HORT. 11: 247-252. Ueda J., Kato J. 1980. Isolation and identification of a senescence-promoting substance from wormwood (Artemisia absinthium L.). PLANT PHYSIOL. 66: 246-249. Ueda J., Miyamoto K., Saniewski M. 2003. Gum formation and leaf abscission in ornamental Japanese cherry (Prunus yedoensis): A possible role of ethylene and jasmonates in these processes. In: M. Vendrell, H. Klee, J.C. Pech, F. Romojaro (eds.) Biology and Biotechnology of the Plant Hormone Ethylene III., IOS Press, Amsterdam, Berlin, Oxford, Tokyo, Washington, DC, NATO Science Series, Series I: Life and Behavioural Sciences, Vol. 349, pp. 303-304. Xu Y., Chang P.F.L., Liu D., Narasimhan M.L., Raghothama K.G., Hasegawa P.M. and Bressan R.A.1994. Plant defence genes are synergistically induced by ethylene and methyl jasmonate. PLANT CELL 6: 1077-1085. Yang S.F., Hoffman N.E. 1984. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants. ANNU. REV. PLANT PHYSIOL. 35: 155-189.

shankr

PERENNIAL CANKER OF PEACH The presence of gum or sap exudate on the scaffold limbs or trunks of peach trees may be caused by insect borers, by winter or mechanical injury, and by such diseases as Coryneum, and bacterial and perennial cankers. Perennial canker, common in most Illinois orchards, occurs throughout the Midwest wherever peaches are grown. This disease has a variety of names, some of which are die back, peach canker, Valsa canker, and Cytospora canker. Perennial canker is caused by two species of fungi, Valsa leucostoma and Valsacincta (imperfect stage Cytospora). It is not a new disease, and mus research has been done to develop adequate control measures for it. The disease is often destructive in young orchards where it causes the premature death of trees. Older trees that are affected gradually lose productivity and longevity. Symptoms Cytospora fungi cause cankers to form on any aerial portion of a tree–the trunk, scaffold limbs (Figure 1), twigs (Figure 2), and fruit pedicels. These fungi are not primary invaders of peach trees and are incapable of attacking healthy peach bark. Valsa fungi require wounds or dead areas in the bark in order to establish themselves. Once they are established, gum is exuded at the point of infection (Figures 2 and 3). This gum, initially a light amber color, gradually turns dark brown. Beneath the gum, a small necrotic lesion is apparent. The lesion gradually enlarges, with the resulting collapse of the inner bark tissue. Older cankers are generally oval in shape (Figure 4) because the lesion develops faster vertically than horizontally. The outer bark in older cankers is generally broken and disorganized, while in new cankers it remains intact except at the points of gummosis. The canker will continue to spread from year to year. It enlarges by repeated invasion of adjoining healthy tissue by the fungus during favorable growing periods. Each spring, growth of the host causes a callus ring to form around the canker as a defense mechanism. The number of these rings may denote the age of the canker. Continued growth of the fungus eventually girdles the affected limb, causing it to die (Figure 4). In addition to cankers, Cytospora also causes a “die back” symptom on twigs in the spring. Affected twigs die back from a light yellowish brown, gum-encrusted twig canker (Figure 2). Disease Cycle Cytospora spp. survive on cankered tissue and dead twigs, and can be found on the surface of peach trees all year long. Fruiting bodies known as pycnidia form on cankered surfaces. The pycnidia are visible macroscopically as tiny black specks embedded in the bark. Each pycnidium contains thousands of microscopic pycnidiospores, that are exuded as long gelatinous tendrils during humid weather. The spores are disseminated to injured bark tissues by rain, insects, machinery, farm workers, pruning tools, and birds. The spores germinate and start new infections when the temperature and moisture conditions are favorable. Optimum conditions for the development of Cytospora cincta generally occur in the spring when temperatures average 64° to 70°F (18° to 21°C). Infection by C. leucostoma is favored by warmer temperatures (optimum, 81°F or 28°C) that occur in the late summer or early fall. New pycnidia form 7 to 8 weeks after infection, thus completing the cycle. Susceptibility Perennial canker affects peaches as well as other stone fruits–plum, prune, apricot, and cherry. Peach varieties vary slightly in their susceptibility to perennial canker. The winter-hardy varieties, those that defoliate rapidly, and those that heal rapidly show the least amount of infection. Control 1. When planting an orchard, avoid low-lying sites. Such sites have poor air and water drainage, and increase the possibility of winter injury. Destroy neglected peach, nectarine, plum, prune, apricot, and cherry trees that are nearby (within a quarter to a third of a mile). Separating new plantings from Cytosporainfected trees markedly reduces the number of canker infections. 2. Plant disease-free nursery stock or winter-hardy varieties. Choose winter-hardy rootstocks that induce an early hardening of the scion. 3. Fertilize in the late winter or early spring, to avoid succulent, cold-tender growth in the fall. Excessive nitrogen fertilization prevents normal maturation, therefore increasing the susceptibility to injury from sudden extreme drops in temperature in the early winter. 4. Prune the trees annually, this allows for good circulation and eliminates the necessity of making major cuts. The open center system is suggested for peaches, nectarines, and Japanese-type and hybrid plums; the modified-leader or open-center system is suggested for apricots. Prune during the period from late winter until just after bloom. Remove narrow-angle crotches, all weak and dead wood and limbs, and all cankered branches that can be spared. Cut at least 4 inches (10 cm) below a canker. Make the pruning cuts close, otherwise the stubs will not heal properly. Paint major pruning cuts (those greater than 2 inches or 5 cm in diameter) with a wound dressing. Clean out cankers that occur on the large limbs and trunk. Remove infected tissue with a chisel or knife. Disinfect the blade by dipping it in 70 percent alcohol or in a 25 percent chlorine bleach solution before cutting into healthy tissue. Paint the cleaned out area with a wound dressing. Limbs containing large cankers (limbs more than half girdled) should be removed from the orchard and destroyed. 5. Avoid mechanical injury to tree trunks during mowing and when other cultural practices are being followed. Use a sod cover to avoid root injury that occurs with cultivation and to prevent erosion. Use chemical weed control around the trunks. Apply a sun-reflective paint to the south and southwest sides of tree trunks. Use a latex-type, white house paint diluted with equal parts of water. Dress any wounds with a tree paint. 6. Control insects and other diseases. Tree borers and the Oriental fruit moth produce wounds and disseminate spores. It is particularly important to control the lesser peach tree borer. Control brown rot and remove rotted fruit. Employ good protective fungicide programs such as those outlined in Illinois Commercial Tree Fruit Spray Guide. Control peach leaf curl. Spray dilute concentrations!